Nueva especie de rana bromelícola del género Pristimantis (Amphibia: Craugastoridae), meseta de la Cordillera del Cóndor, Ecuador

Keywords: Craugastoridae, Sandstone plateau, Cordillera del Cóndor, Pristimantis muranunka sp. nov.

Abstract

We describe a small frog of the genus Pristimantis inhabiting bromeliads (snout-vent length 20.3‑23.3 mm in females, 16.1‑17.4 mm in males), from a remote sandstone plateau of the Cordillera del Condor, in southeastern Ecuador, with an altitudinal range of 2,045‑2,860 m. A phylogeny based on sequences of DNA (mitochondrial and nuclear genes) supports inclusion in the P. orestes group and suggests an undescribed Pristimantis from the southern slope of eastern Ecuador as the closest taxon. The new species differs from its congeners in Ecuador by having predominantly black dorsal and ventral coloration; comprehensive and robust palmar surface with stubby fingers; presence of a deep and wide groove from the anterior base of finger I to the rear base of the palmar tubercle; subarticular divided tubers, enlarged supernumerary small granules and tubercles. All individuals were found in terrestrial bromeliads. The calls are short, frequency modulated, comprising of a note 5‑15 ms in duration. Insects represented 80% of the diet of the new species.

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Author Biographies

Jorge Brito M., Instituto de Ciencias Biológicas Escuela Politécnica Nacional Instituto Nacional de Biodiversidad

Casilla: 17‑01‑2759
Quito, Ecuador

Calle Rumipamba 341 y Av. de los Shyris
Casilla: 17‑07‑8976
Quito, Ecuador

Investigador en el departamento de Mastozoología y Herpetología.

Ana Almendáriz C., Instituto de Ciencias Biológicas Escuela Politécnica Nacional

Casilla: 17‑01‑2759
Quito, Ecuador

Diego Batallas R., Instituto Nacional de Biodiversidad

Calle Rumipamba 341 y Av. de los Shyris

Casilla: 17‑07‑8976
Quito, Ecuador

Santiago R. Ron, Museo de Zoología Escuela de Biología Pontificia Universidad Católica del Ecuador

Av. 12 de Octubre y Roca, Aptdo. 17‑01‑2184
Quito, Ecuador

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Published
2017-06-13
How to Cite
Brito M., J., Almendáriz C., A., Batallas R., D., & Ron, S. (2017). Nueva especie de rana bromelícola del género Pristimantis (Amphibia: Craugastoridae), meseta de la Cordillera del Cóndor, Ecuador. Papéis Avulsos De Zoologia, 57(15), 177-195. https://doi.org/10.11606/0031-1049.2017.57.15
Section
Original Article

INTRODUCCIÓN

Las ranas cutines de la familia Craugastoridae (Pyron & Wiens, 2011; Padial et al., 2014), restringidas al nuevo mundo, presentan un sistema de reproducción sofisticado ya que no requieren cuerpos de agua (Lynch & Duellman, 1997) y se encuentran entre los anfibios más diversos del planeta (Frost, 2016). Habitan la mayoría de ecosistemas de Sudamérica tropical: páramos, bosques montanos, bosques tropicales y bosques secos; tanto en estratos terrestres como arbóreos (Lynch & Duellman, 1997; Padial et al., 2014).

En Ecuador los craugastóridos del género Pristimantis son los anfibios más diversos, alcanzan 199 especies, 111 de las cuales son endémicas; Pristimantis representa el 33.5% de las 588 especies reportadas para Ecuador (Ron et al., 2016). Gran parte de la diversidad del género proviene de los bosques montanos de la vertiente oriental, región dónde se han descrito varias especies nuevas en los últimos cinco años (e.g.,Reyes-Puig & Yánez-Muñoz, 2012; Reyes-Puig et al., 2013; Batallas & Brito, 2014; Brito et al., 2014; Urgilés et al., 2014; Yánez-Muñoz et al., 2014; Brito et al., 2016; Brito et al., 2017; Navarrete et al., 2016).

Expediciones biológicas a la remota Cordillera del Cóndor en la región sur oriental de Ecuador han revelado hallazgos muy interesantes, incluyendo un enlace biogeográfico entre el Cóndor y el Escudo Guayanés, región ubicada a 3.000 km en el nordeste de América del Sur (Berry et al., 1995; Neill, 2005). Aunque ambas regiones son similares en la composición del sustrato, el Cóndor es geológicamente más joven (Berry et al., 1995); varios géneros de plantas restringidos a la región guayanesa han sido reportados en el Cóndor (e.g.,Ulloa-Ulloa & Neill, 2006; Ulloa-Ulloa et al., 2012).

Recientemente Almendáriz et al. (2014), realizaron una revisión de los anfibios de la Cordillera del Cóndor y reportaron a 120 especies, de las cuales 55 corresponden al género Pristimantis, 28 de ellas potencialmente nuevas y a la espera de ser descritas formalmente. En el presente manuscrito se describe una de ellas (Pristimantis sp. 23 sensuAlmendáriz et al. 2014), especie nueva de rana terrestre que proviene de los tepuis sobre meseta de arenisca de una área remota al sureste de Ecuador.

MATERIALES Y MÉTODOS

La terminología del género sigue a Hedges et al. (2008) y para la familia seguimos a Pyron & Wiens (2011) y Padial et al. (2014). Para la descripción de la especie se adopta la terminología estandarizada de Lynch & Duellman (1997). Los especímenes colectados fueron sacrificados según las recomendaciones de Chen & Combs (1999) y preservados según los protocolos de Simmons (2002).

Relaciones Filogenéticas y Distancias Genéticas

Estimamos las relaciones filogenéticas de la especie nueva y de especies relacionadas, en base a secuencias de ADN de los genes mitocondriales 12S, 16S (secuencia parcial), tARN Leu , NADH deshidrogenasa subunidad 1 (ND1), tARN Ile , tARN Gln y el gen nuclear activador de la recombinación RAG1 con un total de hasta 4.215 pb. El ADN total fue extraído de tejido de hígado preservado en etanol al 95% con el protocolo de guanidina tiocianato. Aplicamos la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para amplificar el ADN. Los cebadores utilizados para 16S fueron los mismos de Henicke et al. (2007).

Para ND1 fueron LX16S1a por Zhang et al. (2013), 16S-Frog y tMet-frog por Wiens et al. (2005), WL384 y WL379 por Moen & Wiens (2009), y WL379b diseñado para este estudio (secuencia GCACTAGCAATAATTATYTGAACBCC, sentido derecho). Para RAG1 los cebadores fueron R182 y R270 (Hedges et al., 2008). La amplificación se llevó a cabo con protocolos estándar. Los productos de PCR fueron secuenciados por el Grupo de Secuenciación Macrogen (Macrogen Inc., Seúl, Corea).

Para generar una filogenia, también incluimos secuencias congenéricas disponibles en GenBank. Para optimizar el muestreo de especies dentro de Pristimantis, identificamos las secuencias 16S más similares a las de la nueva especie usando una búsqueda BLAST en GenBank (procedimiento blastn, parámetro identities). Las secuencias más similares fueron del grupo Pristimantis orestes: P. simonbolivari (identidad 92%, número de accesión EF493671.1) y P. orestes (identidad 90%, accesión EF493388.1). Por lo tanto, incluimos todas las secuencias GenBank disponibles del grupo P. orestes. Para asegurar una correcta ubicación de la especie nueva dentro de Pristimantis, también incluimos secuencias de especies representativas de todos los clados mayores de Pristimantis reportados por Padial et al. (2014) y Pyron (2014). Para ubicar la raíz de la filogenia incluimos secuencias GenBank de Lynchius nebulanastes (KU 181408), L. flavomaculatus (KU 218210), Hypodactylus brunneus (KU 178258) y Strabomantis biporcatus (CVULA7073). La matriz final contenía 200 terminales y 4.215 pb. Las muestras de especies del grupo Pristimantis orestes, incluyendo sus números de acceso al GenBank están listadas en la Tabla 1.

TABLA 1:
Números de accesión al Genbank para las secuencias de ADN usadas en el análisis filogenético.
Voucher Especie Gen Provincia: Localidad Referencia
12S 16S ND1 RAG1
QCAZ 45464 P. orestes JF906323 - - - Loja: Parque Nacional Podocarpus, guardianía Cajanuma Arteaga & Guayasamin 2011
QCAZ 45646 P. orestes JF906324 - - - Loja: Parque Nacional Podocarpus, guardianía Cajanuma Arteaga & Guayasamin 2012
QCAZ 46744 P. bambu - KY967659 KY967655 KY967693 Cañar: Reserva Mazar Este estudio
QCAZ 46743 P. bambu - KY967674 KY967654 KY967692 Cañar: Reserva Mazar Este estudio
QCAZ 46739 P. bambu JF906321 - - - Cañar: Reserva Mazar Arteaga & Guayasamin 2011
QCAZ 46706 P. bambu JF906319 - - - Cañar: Reserva Mazar Arteaga & Guayasamin 2012
QCAZ 46710 P. bambu JF906320 - - - Cañar: Reserva Mazar Arteaga & Guayasamin 2011
QCAZ 46708 P. bambu - KY967673 - - Cañar: Reserva Mazar Este estudio
QCAZ 46740 P. bambu JF906322 - - - Cañar: Reserva Mazar Arteaga & Guayasamin 2011
QCAZ 56567 P. simonbolivari - KY967676 KY967657 KY967695 Bolívar: Cashca Totoras Este estudio
KU 218254 P. simonbolivari EF493671 EF493671 - - Bolívar: Cashca Totoras Heinicke et al. 2007
QCAZ 56535 P. sp. - KY967675 KY967656 KY967694 Azuay: Laguna Patococha Este estudio
QCAZ 27563 P. mazar - KY967665 - KY967684 Cañar: Reserva Mazar, La Libertad Este estudio
QCAZ 27559 P. mazar - KY967664 KY967646 KY967683 Cañar: Reserva Mazar, La Libertad Este estudio
QCAZ 27572 P. mazar JF906315 KY967666 KY967647 KY967685 Cañar: Reserva Mazar, La Libertad Guayasamin & Arteaga 2013; este estudio
KU 218257 P. orestes EF493388 EF493388 - - Azuay: 7 km E Sigsig Heinicke et al. 2007
QCAZ 45661 P. andinognomus - KY967671 KY967652 KY967690 Zamora Chinchipe: Reserva Tapichalaca Este estudio
QCAZ 45675 P. andinognomus - KY967672 KY967653 KY967691 Zamora Chinchipe: Reserva Tapichalaca Este estudio
QCAZ 16683 P. andinognomus - KY967662 KY967644 KY967681 Zamora Chinchipe: Reserva Tapichalaca Este estudio
QCAZ 16697 P. andinognomus - KY967663 KY967645 KY967682 Zamora Chinchipe: Reserva Tapichalaca Este estudio
QCAZ 45534 P. andinognomus - KY967669 KY967650 KY967688 Loja: Parque Nacional Podocarpus, guardianía Cajanuma Este estudio
QCAZ 45531 P. andinognomus - KY967668 KY967649 KY967687 Loja: Parque Nacional Podocarpus, guardianía Cajanuma Este estudio
QCAZ 45527 P. andinognomus - KY967667 KY967648 KY967686 Loja: Parque Nacional Podocarpus, guardianía Cajanuma Este estudio
QCAZ 45556 P. Orestes - KY967670 KY967651 KY967689 Loja: Parque Nacional Podocarpus, Lagunas del Compadre Este estudio
MEPN 14737 P. muranunka - KY967661 KY967643 KY967680 Zamora Chinchipe: Cerro Plateado Este estudio
MEPN 14722 P. muranunka - KY967660 KY967642 KY967679 Zamora Chinchipe: Cerro Plateado Este estudio
MEPN 14720 P. muranunka - - KY967641 KY967678 Zamora Chinchipe: Cerro Plateado Este estudio
DHMECN 3112 Pristimantis sp. - KY967658 KY967640 KY967677 Zamora Chinchipe: Reserva Tapichalaca Este estudio

La alineación preliminar de las secuencias se realizó con software MAFFT 6.814b con el algoritmo L-INS-i (Katoh & Standley, 2013). Regiones de alineación ambigua en la matriz fueron corregidas manualmente en Mesquite 3.01 (Maddison & Maddison, 2014). Los árboles filogenéticos fueron obtenidos usando el criterio de optimalidad de máxima verosimilitud. Debido a que los genes analizados pueden haber evolucionado bajo procesos distintos, estimamos el modelo con mejor ajuste independientemente para 11 particiones. Usamos el software PartitionFinder v.1.1.1 (Lanfear et al., 2012) para estimar simultáneamente los mejores modelos para cada partición y la mejor estrategia de partición para nuestros datos. Las 11 particiones fueron: 12S, 16S, tRNA Ile , tRNA Leu , tRNA Gln y una para cada posición de los codones de los genes ND1 y RAG1.

Para la búsqueda de Máxima Verosimilitud se utilizó el software GARLI 2.0 (Zwickl, 2006). Empleamos los parámetros de búsqueda estándar con la excepción de “genthreshfortopoterm” (fijado en 150,000) y “limsprrange” (fijado en 10). La búsqueda tuvo 20 réplicas: 10 iniciando con árboles al azar y 10 con árboles stepwise. Los árboles encontrados en las 20 réplicas tuvieron valores de Máxima Verosimilitud muy similares indicando que suficiente exhaustividad en la búsqueda. Para estimar el soporte para las ramas aplicamos un análisis de bootstrap no paramétrico con 200 pseudoréplicas. Cada pseudoréplica tuvo los mismos parámetros de búsqueda que el análisis completo, excepto por el número de réplicas que fue 2 en lugar de 20. Las distancias genéticas p no corregidas para el gen 16S fueron calculadas en Mesquite 3.01 (Maddison & Maddison, 2014) excluyendo gaps y posiciones nucleotídicas ambiguas. Se incluyeron todas las secuencias sobrelapadas entre cada par de terminales.

Caracteres Morfológicos

Las medidas se tomaron con un calibrador digital Buffalo Tools (precisión de ± 0.01 mm). Los caracteres morfológicos analizados fueron los siguientes: (1) Longitud rostro-cloaca; (2) ancho de la cabeza (medido a nivel de las mandíbulas posteriores); (3) altura de la cabeza; (4) longitud de la cabeza (desde el borde posterior del escamoso hasta la punta del hocico); (5) diámetro ocular; (6) distancia ojo-narina (desde el margen anterior de la órbita hasta el margen posterior de la narina; (7) distancia ojo-tímpano (medido desde el borde proximal del ojo al borde distal del tímpano); (8) distancia internarial (distancia entre los bordes proximales de las narinas); (9) distancia interorbital (entre bordes proximales de los parpados); (10) diámetro del tímpano; (11) longitud del fémur; (12) longitud de la tibia (desde la rodilla flexionada hasta el talón); (13) longitud del pie (tomado desde el margen proximal del tubérculo metatarsal interno hasta la punta del disco del dedo IV); (14) longitud de la mano (distancia desde el borde proximal del tubérculo palmar interno a la punta del dedo III; (15) longitud del I dedo manual (tomado desde el borde interno del tubérculo tenar hasta la punta del disco).

La morfometría y terminología siguen a Lynch & Duellman (1997); Rueda & Lynch (1993) y Duellman & Lehr (2009). El sexo se determinó por disección (comprobando la presencia de testículos u oviductos) y comprobación de presencia/ausencia de hendiduras vocales.

La coloración en vida fue tomada de las notas de campo y fotografías a color; siguiendo la terminología del catálogo de colores de Köhler (2012). El material examinado (Apéndice 1) se encuentra depositado en la sección de Herpetología del Museo Ecuatoriano de Ciencias Naturales (DHMECN), en el Museo de Historia Natural Gustavo Orcés de la Escuela Politécnica Nacional (MEPN) y en el Museo de Zoología de la Pontificia Universidad Católica del Ecuador (QCAZ).

Llamadas

Las llamadas se registraron con una grabadora digital Zoom H4n conectada a un sistema modular Sennheiser K6-C y acoplada a un micrófono de cabezal Sennheiser ME 66, a una distancia de grabación de 3 m; tomando la temperatura y humedad con un termómetro Springfield (precisión de ± 1°C). Para los análisis acústicos se utilizó el programa Adobe Audition CS6 a una frecuencia de muestreo de 44.1 kHz y 16 “bits” de resolución (Almendáriz & Batallas, 2012; Batallas & Brito, 2014); en la diagramación del oscilograma y sonograma se utilizó el programa Raven 1.4 (Charif et al., 2010) a 512 puntos de resolución de la transformación rápida de Fourier (FFT). Las grabaciones fueron obtenidas el 24 de agosto del 2012 del ejemplar MEPN 14727, a una temperatura ambiental de 12°C.

Los parámetros que se analizaron fueron: (1) Frecuencia dominante: frecuencia de mayor energía medida a lo largo de toda la llamada; (2) Llamados/minuto: repetición de los llamados en el lapso de un minuto; (3) Notas/llamado: número de unidades acústicas de un determinado patrón de amplitud reconocido en los llamados; (4) Duración de los llamados: tiempo desde el inicio hasta el final de un llamado, medido con el analizador de forma de onda; (5) Intervalos entre llamados: tiempo transcurrido entre llamado y llamado. Las definiciones y mediciones realizadas en los parámetros acústicos, se siguieron según los términos de Duellman & Pyles (1983); Crocroft & Ryan (1995); Angulo (2006); Díaz & Cádiz (2007) y Batallas & Brito (2014).

Dieta

Para los análisis de contenido estomacal seguimos las consideraciones de Muñoz-Guerrero et al. (2007) y Martínez-Coronel & Pérez-Gutiérrez, (2011). La categoría taxonómica que comprende el listado de presas corresponde al nivel de clase, orden y familia. El material que por su avanzado estado de digestión no fue posible determinar, se consideró bajo la categoría de artrópodos no determinados.

RESULTADOS

Relaciones Filogenéticas y Distancias Genéticas

La matriz final tuvo 200 terminales y 4.215 pares de bases. La filogenia (Suplementario 1) mostró varios clados de Pristimantis con alto soporte. Sin embargo, no discutiremos las relaciones intragenéricas puesto que esa discusión va más allá de los objetivos de la presente publicación. La filogenia (Fig. 1) mostró que la nueva especie es hermana de una especie no descrita colectada en Tapichalaca, Zamora Chinchipe (DHMECN 9656). Ambas especies son hermanas de un clado conformado por especies asignadas al grupo P. orestes (Fig. 1): P. andinognomus, P. bambu, P. mazar, P. orestes, P. simonbolivari y tres especies no descritas. Pristimantis orestes es polifilético ya que incluye tres linajes, uno de especímenes colectados en Cajanuma, Loja (e.g., QCAZ 45464), otro de un espécimen colectado cerca de Sigsig, Azuay (KU 218257) y un tercero colectado en la Laguna del Compadre, Loja (QCAZ 45556).

Filograma de las relaciones de los cutínes del grupo Pristimantis orestes. Las probabilidades posteriores Bayesianas se indican sobre las ramas. Las especies del grupo externo no se muestran. Al número de museo le prosigue el nombre de la especie.

FIGURA 1: Filograma de las relaciones de los cutínes del grupo Pristimantis orestes. Las probabilidades posteriores Bayesianas se indican sobre las ramas. Las especies del grupo externo no se muestran. Al número de museo le prosigue el nombre de la especie.

El rango de distancias genéticas p no corregidas, gen 16SD, entre P. muranunka sp. nov., y su especie hermana es 7.7-9.9%. El rango de distancias genéticas con respecto a las demás especies del grupo P. orestes es 7.8%-11.3%. Su posición filogenética, las altas distancias genéticas con respecto a sus especies más cercanas y sus características morfológicas únicas (ver abajo) corrobora que los especímenes colectados corresponden a una especie nueva que describimos a continuación.

Pristimantis muranunka sp. nov.

Pristimantis sp. Almendáriz, Simmons, Brito & Vaca-Guerrero. 2014. Amphib. Reptile Conserv. 8(1):45-64. Tabla 1 (“Pristimantis sp. 23”).

Holotipo

Hembra adulta MEPN 14721, colectada por Jorge Brito el 22 de agosto de 2012 en Cerro Plateado (04°34’43.89”S; 78°47’24.75”O, 2.300 m), parroquia Nuevo Paraíso, cantón Nangaritza, provincia de Zamora Chinchipe, República del Ecuador.

Paratipos

Hembras adultas MEPN 14722, 14729-30, 14735-37; machos adultos MEPN 14720, 14723, 14725-28, 14731-34, colectados por Jorge Brito, el 24 de agosto de 2012, a cuatro kilómetros al sureste de la localidad típica (04°37’3.64”S; 78°46’55.75”O, 2.860 m). Machos adultos QCAZ 65025, colectado por Diego Almeida, Eloy Nusirkia, Fernando Ayala, Javier Pinto, Alex Achig y Malki Bustos, el 23 de septiembre de 2016 (04°36’05.28”S; 78°47’18.68”O, 2.045 m); QCAZ 65198, 65201, 65204, 65206, 65214-15; hembras adultas QCAZ 65197-96, 65199, 65205, 65207-09, 65211-13, 65218, 65220; hembras subadultas QCAZ 65200, 65210, 65202-03, recolectados por los mismos colectores el 28 de septiembre de 2016 (04°36’18.12”S; 78°48’56.38”O, 2.320 m).

Etimología

El nombre especifico muranunka hace referencia a los vocablos de la etnia Shuar: Mura = vegetación bambosa (vegetación achaparrada con abundancia de musgos) que crece sobre la meseta de arenisca, Nunka = región o territorio. “Mura nunka” llaman los Shuar a las mesetas de arenisca de la Cordillera del Cóndor de donde nacen las fuentes de agua.

Nombre propuesto en español: Cutín de Mura nunka.

Proposed English name: Mura nunka Rainfrog.

Diagnóstico

Se asigna la nueva especie al género Pristimantis (Lynch & Duellman, 1997; Hedges et al., 2008; Padial et al., 2014) y al grupo de especies P. orestes (ver Discusión). Si bien la nueva especie no está anidada dentro del grupo P. orestes, es su taxón hermano (junto a una especie no descrita de Tapichalaca). Por lo tanto, expandimos la definición del grupo P. orestes para incluir a las dos especies. La filogenia muestra un alto soporte para el grupo P. orestes (bootstrap = 87), incluyendo P. muranunka. La nueva especie se diferencia de otras especies del género por la combinación de los siguientes caracteres: (1) Piel del dorso finamente tuberculada; vientre areolado, pliegues dorso lateral y discoidal presentes; (2) membrana timpánica y anillo timpánico presentes; (3) hocico corto, en vista dorsal redondeado, ligeramente angular de perfil; (4) numerosos tubérculos pequeños aplanados y redondeados sobre el párpado superior; distancia inter-orbital más amplia que el párpado; (5) procesos vomerinos con odontóforos pequeños; (6) machos sin hendiduras vocales y almohadillas nupciales; (7) dedo manual I ligeramente más corto que el II, discos redondeados y con almohadillas ligeramente más dilatadas en los dedos III-IV; (8) dedos manuales con rebordes cutáneos; (9) tubérculos ulnares bajos y pequeños; (10) talón sin tubérculos; borde externo del tarso con diminutos tubérculos redondeados, pliegue tarsal interno presente; (11) tubérculos palmares y plantares grandes, aplanados y con varias granulaciones pequeñas; (12) dedos pediales con rebordes cutáneos; membrana interdigital basal presente únicamente entre los dedos IV-V; dedo V más largo que el III; discos del pie de tamaño similar a los de las manos; (13) en vida, dorso negro con manchas redondeadas pequeñas y dispersas de color geranio, vientre negro uniforme; iris carmín obscuro; (14) adultos de tamaño pequeño, LRC en machos 16.1-17.4 mm (X 16.8 ± 0.3, n = 11), en hembras 20.3-23.3 mm (X 22.1 ± 1.0, n = 7).

Comparaciones

Comparamos a la especie nueva con especies del grupo Pristimantis orestes (Tabla 2). Pristimantis muranunka podría confundirse con P. proserpens, P. colodactylus y P. paquishae por la presencia de extremidades cortas y dedos cortos y gruesos. Sin embargo, Pristimantis proserpens (Lynch, 1979) exhibe una coloración del dorso y vientre café (generalmente negro en P. muranunka); P. colodactylus (Lynch, 1979; Lynch & Duellman, 1980; Duellman & Pramuk, 1999; Duellman & Lehr, 2009) no presenta membrana y anillo timpánico (presente en P. muranunka); P. paquishae (Brito et al., 2014) es de cuerpo robusto, coloración ventral amarillenta, iris blanquecino y dedos más largos (cuerpo aplanado, color ventral negro, iris carmín oscuro y dedos cortos y gruesos en P. muranunka).

TABLA 2:
Caracteres morfológicos usados para distinguir a Pristimantis muranunka sp. nov., de especies similares.
Carácter muranunka proserpens colodactylus orestes andinognomus tinajillas paquishae simonbolivari mazar bambu
Longitud rostro-cloaca (mm) ♂ 16.1-17.4 ♂ 15.2-21.0 ♂ 14.0-20.7 ♂ 18.1-27.2 ♂ 10.0-14.5 ♂ 18.6 ♂ 15.2-17.8 ♂ 16.0-19.2 ♂ 14.9-18.1 ♂ 17.4-20.1
♀ 20.3-23.3 ♀ 20.2-23.5 ♀ 16.5-25.8 ♀ 19.8 ♀ 12.6-17.9 ♀ 13.3 ♀ 21.7-24.9 ♀ 18.5-22.0 ♀ 19.9-23.7 ♀ 24.6-26.4
Piel dorsal Finamente tuberculado Aereolado Aereolado Finamente tuberculado Levemente granular Finamente granular Ligeramente tuberculada Con tubérculos pequeños Áspera con tubérculos pequeños Áspera con tubérculos pequeños
Piel ventral Aereolado Aereolado Aereolado Aereolado Aereolado Fuertemente granular Aereolado, excepto garganta Aereolado Aereolado Aereolado
Coloración dorsal en vivo Negra Café - Café Cobre pálido Café oscura a café rojizo claro Pardo ocráceo Café rojizo Dorso café rojizo Marrón anaranjado
Coloración ventral en vivo Negra Café pálido - Gris - Café rojizo oscuro a gris oscuro con manchas gris claro Amarillenta Naranja de crema a gris Marrón cobrizo
Hendiduras bocales en machos Ausentes Ausentes Ausentes Presente Presentes Presentes Ausentes Presentes Presentes Presentes
Dedos manuales Muy cortos y rechonchos Cortos y rechonchos Cortos y rechonchos Cortos Cortos Cortos Cortos Cortos Cortos Cortos
Terminaciones digitales Redondeados Redondeados Redondeados Redondeados Redondeados Espatulados Truncados Redondeados Redondeados a ligeramente expandidos Redondeados
Membrana y anillo timpánico Presentes Prominentes Ausentes Presentes Presentes Presentes Presentes Poco definido Presentes Ausente, distintivo
Elevación (msnm) 2.045-2.860 1.710-2.620 2.195-3.140 2.720-3.120 2.400-2.800 1.900-2.500 2.300 3.000-3.300 2.895-3.415 2.876-2.989
Distribución Bosque Montano Oriental Bosque Montano Oriental Bosque Montano Oriental Páramo, Bosque Montano Oriental Matorral interandino, Bosque Montano Oriental Bosque Montano Oriental Bosque Montano Oriental Bosque Montano Occidental Bosque Montano Oriental, Páramo Bosque Montano Oriental
Fuente Este documento Lynch, 1979 Duellman & Pramuk, 1999 Lynch, 1979 Lehr & Coloma, 2008 Urgilés et al., 2014 Brito et al., 2014 Lynch & Duellman, 1997 Guayasamin & Arteaga, 2013 Arteaga-Navarro & Guayasamin, 2011

Otras especies con las que podría ser confundido son P. andinognomus (Lehr & Coloma, 2008), el cual presenta el párpado superior con dos tubérculos cónicos agrandados, superficie anterior de los muslos y superficie oculta de las pantorrillas café claro con puntos diminutos de color café (numerosos tubérculos pequeños aplanados y redondeados sobre el párpado superior, uniformemente obscuro en P. muranunka). Pristimantis bambu (Arteaga-Navarro & Guayasamin, 2011) presenta amplias marcas ámbar delineadas de negro sobre un fondo rojizo anaranjado en la ingle y superficie oculta de los muslos (uniformemente oscuro en P. muranunka). Pristimantis mazar (Guayasamin & Arteaga, 2013) presenta vientre reticulado, líneas negras notorias en los flancos (uniformemente obscuro en P. muranunka). En Pristimantis orestes (Lynch, 1979), la ingle y superficies ocultas de las piernas son negras con grandes puntos blancos (negras sin puntos blancos en P. muranunka). Pristimantis simonbolivari (Wiens & Coloma, 1992) tiene superficie dorsal lisa y dígitos sin rebordes laterales (finamente tuberculado y rebordes laterales presentes en P. muranunka).

Descripción del holotipo

Cabeza más pequeña que el cuerpo, 40.3% de LRC, longitud de la cabeza ligeramente menor que su anchura, 97.5%; hocico corto, redondeado en vista dorsal (Fig. 2A), ligeramente angular de perfil (Fig. 2B); diámetro del ojo ligeramente menor que la distancia ojo-narina, 188.6%; narinas ligeramente corrugadas, dirigidas lateralmente; canto rostral recto; región loreal ligeramente angular; labios ligeramente abultados; toda la cabeza incluyendo el párpado superior con numerosos tubérculos pequeños y redondeados (Fig. 2A-B); crestas craneales ausentes, parietales con surco medio, fontanelas occipitales poco profundas pero evidentes; pliegue supratimpánico extendido desde la región anterior del ojo, hasta el borde posterior del brazo; borde superior del tímpano superpuesto por el pliegue; un tubérculo postrictal presente y varios de poco relieve; membrana timpánica presente; anillo timpánico visible, ovalado, su longitud es el 45.8% del diámetro del ojo; coanas pequeñas, redondeadas, ligeramente cubiertas en la parte superior por el piso palatal; procesos vomerianos pequeños, ligeramente redondeados y con bordes irregulares, dientes diferenciables (3-4), redondeados y agrupados medialmente; lengua ligeramente más ancha que larga, con el borde posterior bilobulado, la mitad anterior está adherida al piso de la boca. Piel del dorso finamente tuberculada; pliegues dorsolaterales presentes; superficie ventral areolada; pliegue discoidal presente; cubierta cloacal prominente; tubérculos cloacales pequeños y dispersos alrededor de la cloaca. Numerosos tubérculos pequeños, aplanados y dispersos en los flancos y región dorsolateral. Tubérculos escapulares ausentes; tubérculos pequeños no pronunciados esparcidos en la región ulnar, ausentes en el codo. Superficie palmar amplia y robusta; tubérculo palmar bífido, redondeado y aplanado (Fig. 3A), tubérculo tenar grande y alargado, aproximadamente 1/2 del ancho del tubérculo palmar; tubérculos supernumerarios grandes, aplanados, dispersos y con granulaciones pequeñas; tubérculos subarticulares pequeños, aplanados y divididos; un surco profundo y ligeramente amplio se extiende desde la base anterior del dedo manual I hasta la base posterior del tubérculo palmar; un surco profundo se extiende en la base del dedo III; dedos manuales con rebordes cutáneos ligeramente amplios, sin membranas interdigitales; dedo I ligeramente más corto que el dedo II; disco del dedo I no expandido, discos de los dedos II-IV ligeramente expandidos y redondeados (Fig. 3A); todos los dedos manuales con cojinetes ventrales definidos por hendiduras circunmarginales (Fig. 3A). Extremidades posteriores delgadas, longitud de la tibia 44.4% de la longitud rostro-cloaca; talón sin tubérculos; tubérculos pequeños no protuberantes y dispersos a lo largo del borde externo del tarso; tubérculo metatarsal interno agrandado, ligeramente elevado y ovalado, dos veces más grande que el tubérculo metatarsal externo; tubérculos supernumerarios plantares agrandados, aplanados y con varias granulaciones pequeñas; tubérculos subarticulares definidos y bifurcados, redondeados y aplanados; dedos pediales con rebordes cutáneos, evidentes ventralmente; discos de los dedos pediales I-III ligeramente más grandes que los discos de los dedos manuales, mientras que los discos pediales IV-V son de similar tamaño, los discos están definidos por hendiduras circunmarginales; longitud relativa de los dedos del pie: I<II<III>V<IV; dedo III del pie más pequeño que el dedo V; dedo III del pie llega al borde posterior del segundo tubérculo subarticular del dedo IV (Fig. 3B).

Pristimantis muranunka sp. nov. (MEPN 14721) (A) = Cabeza en vista dorsal y (B) = Cabeza en vista lateral. Barra 2 mm. Ilustraciones: G. Pozo.

FIGURA 2: Pristimantis muranunka sp. nov. (MEPN 14721) (A) = Cabeza en vista dorsal y (B) = Cabeza en vista lateral. Barra 2 mm. Ilustraciones: G. Pozo.

Mano y pie de Pristimantis muranunka sp. nov. (MEPN 14721) (A) = vista palmar, (B) = vista plantar. Nótese la presencia de granulaciones pequeñas en los tubérculos supernumerarios. Barra: 1 mm. Ilustraciones: G. Pozo.

FIGURA 3: Mano y pie de Pristimantis muranunka sp. nov. (MEPN 14721) (A) = vista palmar, (B) = vista plantar. Nótese la presencia de granulaciones pequeñas en los tubérculos supernumerarios. Barra: 1 mm. Ilustraciones: G. Pozo.

Coloración del holotipo en vida

Región dorsal de la cabeza y extremidades delanteras completamente negras. Los dos tercios posteriores del cuerpo, incluyendo las extremidades posteriores de color sepia (#278), en el cuerpo se distinguen manchas redondeadas pequeñas y dispersas de color geranio (#66), esta coloración se torna difusa formando manchas de mediano tamaño hacia las extremidades posteriores, su región ventral y los pies. Ventralmente, la quijada y la región ventral de los brazos son negras. Discos de los dedos de las manos y pies gris blanquecino. Superficies plantar y palmar gris neutro mediano (#298). El iris carmín obscuro (#61) y la pupila negra (Fig. 4).

Holotipo de Pristimantis muranunka sp. nov. (A) = holotipo en vista fronto-lateral y en vista ventral, MEPN 14721 hembra adulta, LRC = 22.0 mm. Variaciones de coloración: (B) = paratipo (QCAZ 65209) hembra adulta, LRC 22.2 mm; (C) = paratopotipo (MEPN 14737) hebra adulta, LRC = 23.2 mm; (D) = macho adulto (MEPN 14727), LRC = 16.6 mm. Fotografías: A, C, D = J. Brito; B = D. Quirola.

FIGURA 4: Holotipo de Pristimantis muranunka sp. nov. (A) = holotipo en vista fronto-lateral y en vista ventral, MEPN 14721 hembra adulta, LRC = 22.0 mm. Variaciones de coloración: (B) = paratipo (QCAZ 65209) hembra adulta, LRC 22.2 mm; (C) = paratopotipo (MEPN 14737) hebra adulta, LRC = 23.2 mm; (D) = macho adulto (MEPN 14727), LRC = 16.6 mm. Fotografías: A, C, D = J. Brito; B = D. Quirola.

Coloración del holotipo en preservado

En etanol, básicamente la coloración es negra en la región antero-dorsal, incluyendo las extremidades delanteras; sobre este fondo se nota una salpicadura de puntos finos blanco-azulado (#191). Hacia los muslos los puntos blanquecinos, algo dispersos, se alinean en bandas. Sobre la pantorrilla y los pies la coloración es una combinación de manchas grises y café canela (#270), producto de la decoloración de las áreas coloreadas en vivo. Los discos de los dedos manuales y pedales mantienen su coloración blanquecina. Garganta, vientre y superficie ventral de las extremidades mantienen el patrón de coloración descrito para la superficie dorsal, excepto la ausencia de puntos blanquecinos y la coloración gris de las superficies palmar y plantar (Fig. 5).

Pristimantis muranunka sp. nov., en preservado. A = vista dorsal y B = vista ventral del holotipo MEPN 14721, hembra adulta, LRC = 22.0 mm. Fotografías: J. Brito.

FIGURA 5: Pristimantis muranunka sp. nov., en preservado. A = vista dorsal y B = vista ventral del holotipo MEPN 14721, hembra adulta, LRC = 22.0 mm. Fotografías: J. Brito.

Medidas del holotipo (mm): Longitud rostro-cloaca = 22.0; ancho de la cabeza = 9.0; altura de la cabeza = 5.2; longitud de la cabeza = 8.9; longitud del fémur = 9.6; longitud de la tibia = 9.8; longitud del pie = 8.5; diámetro del ojo = 2.4; distancia ojo narina = 2.0; distancia ojo tímpano = 1.4; distancia entre narina = 2.0; distancia entre órbitas = 2.3; diámetro del tímpano = 1.1; longitud de la mano = 4.9; longitud del I dedo manual = 2.5.

Variación: La variación de las medidas morfométricas se muestra en la Tabla 3, y los porcentajes corporales en la Tabla 4. La hembra (QCAZ 65209) presenta color dorsal salmón claro que vas desde la parte posterior de las narinas hasta la región superior de la cloaca (Fig. 4B) y la hembra (MEPN 14737) presenta coloración dorsal café oliva (#278), una franja crema en forma de “V” cubre desde la nariz hasta los flancos, en su interior se notan puntos cremas dispersos sobre un fondo café (Fig. 4C). Los machos presentan la siguiente coloración: en la mitad del dorso salmón obscuro (#252), con leves puntos negros, hacia la región dorsal de las extremidades la coloración se torna más obscura por el incremento de puntos y manchas negruzcas (Fig. 4D).

TABLA 3:
Medidas morfométricas (en mm), de Pristimantis muranunka sp. nov. Mínimas, máximas (X = Promedio, SD = Desviación estándar entre paréntesis).
Carácter Hembras (n = 19) Machos (n = 18)
Sexo
LRC 20.3-23.3 (22.8 ± 10.6) 16.1-17.4 (16.8 ± 1.5)
Ancho de la cabeza 8.1-9.3 (8.7 ± 4.3) 6.1-6.7 (6.4 ± 1.2)
Altura de la cabeza 3.6-5.2 (4.4 ± 2.2) 2.9-3.6 (3.2 ± 1.2)
Longitud de la cabeza 7.8-9.1 (8.5 ± 4.1) 5.5-7.5 (6.6 ± 2.5)
Diámetro ocular 2.0-2.7 (2.4 ± 1.2) 1.6-2.4 (2.1 ± 1.3)
Distancia ojo narina 1.7-2.3 (2.0 ± 1.0) 1.5-1.9 (1.6 ± 1.1)
Distancia ojo tímpano 1.2-1.5 (1.4 ± 0.7) 0.4-0.9 (0.7 ± 1.2)
Distancia entre narinas 1.6-2.1 (1.9 ± 0.9) 1.4-1.7 (1.5 ± 0.1)
Distancia entre orbitas 2.1-2.6 (2.4 ± 1.2) 1.7-2.1 (1.9 ± 1.2)
Diámetro del tímpano 0.7-1.1 (0.9 ± 0.5) 0.6-0.9 (0.7 ± 0.1)
Longitud del fémur 9.1-10.5 (9.8 ± 4.8) 7.2-8.1 (7.7 ± 0.2)
Longitud de la tibia 9.4-11.2 (10.3 ± 5.1) 7.7-8.6 (8 ± 0.3)
Longitud del pie 7.2-9.5 (8.4 ± 4.1) 5.6-6.6 (6.1 ± 0.3)
Longitud de la mano 4.2-5.4 (4.8 ± 2.4) 2.9-3.7 (3.4 ± 0.3)
Longitud del I dedo manual 2.1-2.6 (2.4 ± 1.2) 1.4-1.9 (1.7 ± 0.2)

TABLA 4:
Rangos de proporciones morfométricas (en porcentajes) de adultos de Pristimantis muranunka sp. nov.
Carácter Hembras (n = 19) Machos (n = 18)
Longitud de la cabeza/longitud rostro-cloaca 38.4-39.0 34.1-43.1
Longitud de la cabeza/anchode la cabeza 96.2-97.8 89.3-110.9
Ancho de la cabeza/longitudrostro-cloaca 39.9-39.9 37.8-38.5
Longitud del pie/longitudde la tibia 76.5-84.8 72.7-76.7
Longitud del fémur/longitudde la tibia 93.7-96.8 93.5-94.1
Distancia entre orbitas/diámetro ocular 103.8-105 87.5-106.2
Distancia entre narinas/distancia entre orbitas 76.1-80.7 66.6-100
Diámetro del tímpano/diámetro ocular 35.0-40.7 25-56.2
Longitud I dedo manual/longitud de la mano 48.1-50.0 37.8-65.5

Distribución y ecología

La especie nueva es conocida únicamente de la localidad tipo ˝Cerro Plateado˝, sobre una meseta de arenisca en uno de los sitios más altos de la Cordillera del Cóndor entre 2.045 a 2.860 msnm, provincia de Zamora Chinchipe, Ecuador (Fig. 6), dentro de la Reserva Biológica Cerro Plateado. Debido a la cercanía con la frontera con Perú, se presume la presencia de la especie en el vecino país. El polígono convexo de distribución que une todas las localidades de colecta es aproximadamente de 9.7 km². El piso zoogeográfico donde habita Pristimantis muranunka pertenece al Piso Templado (Albuja et al., 2012), el ecosistema corresponde al Arbustal siempreverde y herbazal montano de la Cordillera del Cóndor (Aguirre et al., 2013), el cual se caracteriza por arbustos con ramas nudosas y abundantes musgos y líquenes. En general la altura de la vegetación emergente alcanza hasta 3 m de altura, formando parches aislados, donde dominan arbustos de las familias Clusiacae, Melastomataceae, Asteraceae, Araliaceae y Arecaceae (Fig. 7A). En el estrato bajo (hasta 50 cm), dominan las bromelias terrestres del género Guzmania y Tillansia y herbáceas de las familias Araceae y Poaceae. Entre 2.300 y 2.800 msnm la vegetación es más densa, mientras que en la meseta de mayor altura (2.800-2.860) la vegetación es discontinua y se agrupa en parches, principalmente junto al lecho de los cuerpos de agua, dejando al descubierto espacios de diferente tamaño, que están cubiertos por escasa vegetación y musgos. En cuanto al estrato terrestre, se observa muy poca capa vegetal en la cima de la meseta > 2.800 m, la vegetación herbácea crece en su mayoría sobre las rocas calizas o directamente sobre la arena (Fig. 7B). En general la topografía del suelo de la meseta donde habita la especie nueva es plana o ligeramente ondulada (Fig. 7B); pero en los flancos donde se levanta la meseta las caídas son profundas, con una inclinación de hasta 90°; ésta característica es similar a la meseta de Paquisha, siempre en la Cordillera del Cóndor (Brito et al., 2014).

Localidades de registro de Pristimantis muranunka sp. nov., en la Cordillera del Cóndor.

FIGURA 6: Localidades de registro de Pristimantis muranunka sp. nov., en la Cordillera del Cóndor.

Vista del hábitat de Pristimantis muranunka sp. nov., en la localidad tipo, Cordillera del Cóndor. (A) = vista de Cerro Plateado; (B) = meseta en la cima. Fotografías: J. Brito.

FIGURA 7: Vista del hábitat de Pristimantis muranunka sp. nov., en la localidad tipo, Cordillera del Cóndor. (A) = vista de Cerro Plateado; (B) = meseta en la cima. Fotografías: J. Brito.

Pristimantis muranunka fue colectado en las primeras horas de la noche (18:45-23:00), dentro de las brácteas de bromelias terrestres (Guzmania sp. y Tillansia sp.), con abundante concentración de agua o perchados en los ápices de estas plantas, mas no se avistaron individuos en el suelo. Se escuchó las vocalizaciones de numerosos individuos machos donde las bromelias terrestres eran abundantes.

En las cercanías del hábitat de Pristimantis muranunka se registró a la rana de torrente Colomascirtus condor, la rana venenosa Hyloxalus mystax y varias especies de cutines aún no determinados a nivel específico Pristimantis spp.

Descripción de las llamadas

Se analizó 35 llamadas de Pristimantis muranunka (MEPN 14727), las cuales presentan una nota y son de frecuencia modulada. Las llamadas tienen una frecuencia dominante de 6.38-6.52 kHz (X = 6.46 ± 0.03) y una duración de 5-15 ms (X = 9.73 ± 3.17) (Fig. 8), con intervalos de 847-4001 (X = 1993.17 ± 1031.11), emitiendo 14.97-70.58 llamadas/minuto (X = 37.74 ± 17.33). Las llamadas se parecen a un “tic” metálico (sonido muy característico y común en algunas especies de Pristimantis). Los machos cantan desde las brácteas de las bromelias terrestres.

Oscilograma y espectrograma del llamado de Pristimantis muranunka sp. nov. MEPN 14727.
FIGURA 8: Oscilograma y espectrograma del llamado de Pristimantis muranunka sp. nov. MEPN 14727.

Composición de la dieta

Se analizó ocho estómagos (hembras n = 5, machos n = 8). Los taxa identificados en el contenido estomacal fueron 11, distribuidos en cuatro clases: Insecta, Crustacea y Arachnida. Los insectos alcanzan el 81.8% de preferencia alimenticia; las avispas (Ichneumonidae y Vespidae) y hormigas (Formicidae) del orden Hymenoptera representaron 19.1% de las presas dentro de los insectos; mientras que fueron menos representados los gorgojos (Curculionidae) y tenebrios (Tenebrionidae) del orden Coleoptera (9.5%), las cigarras (Cicadidae) del orden Homoptera (9.5%) y los colémbolos (Entomobryidae) del orden Collembola (4.7%). Los crustáceos (9%) donde las cochinillas (Porcellanidae) del orden Isopoda y los arácnidos (10%) con las arañas (Araneidae) del orden Arachnida ocuparon el porcentaje más bajo.

DISCUSIÓN

De acuerdo con la filogenia, Pristimantis muranunka y Pristimantis sp. (DHMECN 9656) son hermanas de un clado que incluye a especies asociadas al grupo de especies P. orestes (sensuHedges et al., 2008). Pinto-Sánchez et al. (2012) y Padial et al. (2014) demostraron que el grupo no es monofilético. Sin embargo sus análisis solo incluyeron a tres de las 14 especies del grupo. Padial et al. (2014) eliminó el grupo P. orestes arguyendo su falta de monofilia. Nuestra filogenia, sin embargo, muestra que Pristimantis orestes forma parte de un clado con alto soporte (Figs. 1 y Suplementario 1) que agrupa a especies con características morfológicas consistentes con la definición del grupo P. orestes presentada por Hedges et al. (2008): (1) tamaño pequeño, (2) hocico corto, (3) cuerpo robusto, (4) patas cortas, y (5) discos de los dedos reducidos. En base a la información disponible redefinimos el grupo P. orestes para incluir a seis especies: P. andinognomus, P. bambu, P. mazar, P. muranunka, P. orestes, y P. simonbolivari. Excluimos del grupo a P. melanogaster y P. simonsii puesto que nuestra filogenia muestra que están relacionados a otros clados de Pristimantis (Suplementario 1; ver también Padial et al., 2014). La pertenencia de las demás especies asignadas al grupo por Hedges et al. (2008) (e.g., P. atrabracus, P. chimu, P. cordovae) requiere ser corroborada en base a información genética. El morfotipo del grupo P. orestes ha evolucionado independientemente en otros clados de Pristimantis como el grupo P. myersi. Por lo tanto, asignar especies a estos grupos en base a caracteres morfológicos exclusivamente podría generar nuevos problemas de polifilia.

La especie nueva también es morfológicamente similar a Pristimantis proserpens, P. colodactylus, P. paquishae, y P. tinajillas. Estas especies comparten algunos caracteres morfológicos como dedos cortos con terminaciones digitales redondeadas (excepto P. tinajillas que presenta terminaciones espatuladas), discos poco expandidos y cuerpo aplanado dorso-ventralmente. Adicionalmente, comparten caracteres de historia natural como la preferencia por microhábitat de bromelias (terrestres y de sotobosque) y vegetación arbustiva baja.

Hipotéticamente, el acortamiento y ensanchamiento de los dedos y la ampliación palmar en P. muranunka, podría ser una adaptación para adherirse a las hojas, a manera de ventosas; dos especies de Pristimantis de las laderas orientales de los Andes ecuatorianos con condición similar y que también están asociados a bromelias son P. colodactylys y P. proserpens (Lynch, 1979).

La cumbre (meseta de arenisca) de la cordillera del Cóndor presenta características ecosistémicas únicas, dominancia de bromelias terrestres y una vegetación achaparrada adaptada a las condiciones de escasez de nutrientes (Neill, 2005; Terán-Valdez & Guayasamin, 2010). En ese escenario los cutines del género Pristimantis aprovechan principalmente la concentración de agua en las brácteas de las bromelias (Brito et al., 2014) y de la humedad del suelo denominado bamba (Almendáriz et al., 2012). En una recopilación reciente de la herpetofauna de la cordillera del Cóndor, Almendáriz et al. (2014), reportan 55 especies de Pristimantis, 25 aún no descritas, de las cuales aproximadamente el 80% provienen de las estribaciones y el 20% restante de las mesetas de arenisca. Hasta el momento, se han descrito dos especies de Pristimantis que habitan en la meseta de arenisca: P. paquishae (Brito et al., 2014) y P. muranunka (presente estudio). Adicionalmente, dos especies corresponden a las estribaciones: P. minimus (Terán-Valdez & Guayasamin, 2010), y Pristimantis sp. (Valencia, et al., en prep.), en proceso de descripción. La descripción formal de las especies de Pristimantis y estudios adicionales en sitios aún no explorados en la cordillera del Cóndor, situarán a la región entre las zonas más diversas y quizá con la mayor concentración del género para la vertiente oriental de los Andes ecuatorianos.

Acknowledgements

AGRADECIMIENTOS

Jorge Brito y Ana Almendáriz agradecen al Rector de la Universidad Estatal Amazónica (UEA), a David Neill, Director de Investigaciones de la UEA y a la Fundación Naturaleza y Cultura Internacional por invitar a investigadores de la Escuela Politécnica Nacional a la expedición a Cerro Plateado (cordillera del Cóndor). Santiago R. Ron agradece a la Secretaría de Educación Superior, Ciencia, Tecnología e Innovación (SENESCYT) por brindar financiamiento para el trabajo de laboratorio en el marco de la iniciativa Arca de Noé. Glenda Pozo generosamente nos colaboró realizando las ilustraciones. Mario Yánez-Muñoz (DHMECN), Fernando Ayala y Yerka Sagredo (QCAZ), prestaron las facilidades necesarias para la revisión de especímenes en las colecciones bajo su cargo. Mario Yánez-Muñoz realizó valiosas sugerencias para la escritura del manuscrito y los comentarios de dos evaluadores anónimos ayudaron para mejor la calidad del mismo. Las colecciones se realizaron amparadas al permiso de investigación Nº 011-IC-FAU/FLO-DPZCH-MA otorgado por el Ministerio del Ambiente de Zamora Chinchipe.

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Editor Responsável: Marcelo Duarte

Publicado com o apoio financeiro do Programa de Apoio às Publicações Científicas Periódicas da USP

Os periódicos Papéis Avulsos de Zoologia e Arquivos de Zoologia estão licenciados sob uma Licença CC-BY da Creative Commons.

APÉNDICE I

Especímenes examinados

Pristimantis andinognomus (ECUADOR): Provincia Zamora Chinchipe: Palanda, Valladolid, Reserva Tapichalaca: DHMECN 1824-27, 1896, 2020, 2492, 2485-9, 2490, 2495, 2497, 2500, 2502-03 8107, 8135, 8207, 9667, 3041, 3776, 3781.

Pristimantis colodactylus (ECUADOR): 13.5 km al este de Loja: KU 142157 (Fotografías material tipo, AmphibiaWebEcuador).

Pristimantis mazar (ECUADOR): Provincia Azuay: Cuenca, Baños, Hacienda Yanasacha: MEPN 15017.

Pristimantis orestes (ECUADOR): Provincia de Loja: San Antonio de Cumbe: MEPN 3481; 11 km NE Urdaneta: KU 141998 (Fotografías material tipo, AmphibiaWebEcuador).

Pristimantis paquishae (ECUADOR): Provincia Zamora Chinchipe: Paquisha, Paquisha Alto: DHMECN 11213-26; MEPN 15330-36, 15339, 15388.

Pristimantis proserpens (ECUADOR): Provincia Zamora Chinchipe: Paquisha, Paquisha Alto: MEPN 11416, 11420, 11426, 11428-9, 12352, 12361, 12372, 12369, 12367, 12353, 12360, 13591, 14262, 14261, 14264, 15323-26: 1.811 msnm; Caserío Río Blanco: MEPN 13600-07: 1.764 msnm; Bellavista, Destacamento Paquisha Alto: 15262-68: 2.080 msnm. Provincia Morona Santiago: General Leonidas Plaza, Sapote Rancho: NMNH 198484 (Fotografías material tipo, AmphibiaWebEcuador).

Pristimantis tinajillas (ECUADOR): Provincia Morona Santiago: General Leónidas Plaza, Bosque Protector Tinajillas Río Gualaceño: DHMECN 10745-46.

Pristimantis sp. (ECUADOR): Provincia Zamora Chinchipe: Palanda, Valladolid, Reserva Tapichalaca: DHMECN 3777, 8175-6, 8178-9, 8181-95, 9656: 2.300 msnm.

SUPLEMENTARIO 1

Consenso de regla de mayoría para el análisis de máxima verosimilitud del género Pristimantis. El Consenso se obtuvo de 200 pseudoréplicas de bootstrap no-paramétrico para 4.215 pb de los genes 12S, 16S (secuencia parcial), tARN Leu , NADH deshidrogenasa subunidad 1 (ND1), tARN Ile , tARN Gln y el gen nuclear activador de la recombinación RAG1. Los valores de soporte bootstrap se muestran en las ramas.